اثر آلبومین سرم گاوی بر کیفیت اسپرم اسبچۀ خزر طی سردسازی

قدیمی, وحید; ژندی, مهدی

doi:10.22059/ijas.2015.55644

اثر آلبومین سرم گاوی بر کیفیت اسپرم اسبچۀ خزر طی سردسازی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

¹ دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه علوم دامی، دانشکدۀ علوم و مهندسی کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران

² استادیار، گروه علوم دامی، دانشکدۀ علوم و مهندسی کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران

10.22059/ijas.2015.55644

چکیده

هدف از این مطالعه ارزیابی اثر آلبومین سرم گاوی در رقیق‌کنندۀ منی اسبچه در شرایط سرد بود. نمونه‌های منی پس از جمع‌آوری با هم مخلوط و به چهار بخش مساوی تقسیم شدند. هر قسمت با یکی از رقیق‌کننده‌های زیر رقیق شد: 1. رقیق‌کننده‌های فاقد آلبومین سرم گاوی (BSA-0)؛ 2. رقیق‌کننده‌های حاوی 5 میلی‌گرم در میلی‌لیتر آلبومین سرم گاوی (BSA-5)؛ 3. رقیق‌کننده‌های حاوی 10 میلی‌گرم در میلی‌لیتر آلبومین سرم گاوی (BSA-10) و 4. رقیق‌کننده‌های حاوی 15 میلی‌گرم در میلی‌لیتر آلبومین سرم گاوی (BSA-15). پس از 2، 24 و 48 ساعت سردسازی، اثر رقیق‌کننده‌های مختلف بر جنبایی، زنده‌مانی، فعالیت غشا و سطح مالون‌دی‌آلدهاید (MDA) ارزیابی شد. نتایج نشان دادند که جنبایی کل در ساعت 48 در رقیق‌کننده‌های BSA-5 و BSA-10 در مقایسه با رقیق‌کننده‌های BSA-0 و BSA15 به‌طور معنا‌داری بیشتر بود. رقیق‌کنندۀ BSA-10 در مقایسه با رقیق‌کنندۀ BSA-0 و BSA-15 به حفظ جنبایی پیش‌روندۀ بالاتری منجر شد. فعالیت غشا در رقیق‌کنندۀ BSA-15 در ساعت 48 در مقایسه با سایر رقیق‌کننده‌ها به‌طور معنا‌داری کاهش یافت. زنده‌مانی در رقیق‌کنندۀ BSA-15 در مقایسه با سایر رقیق‌کننده‌ها به‌طور معنا‌داری کاهش یافت. در نتیجه رقیق‌کنندۀ BSA-15 در مقایسه با سایر رقیق‌کننده‌ها در ساعت 48 اثر محافظتی کمتری بر جنبایی کل و فعالیت غشای پلاسمایی اسپرم داشت.

کلیدواژه‌ها

20.1001.1.20084773.1394.46.2.3.9

عنوان مقاله [English]

Effect of bovine serum albumin on Caspian horse sperm quality during cooling

نویسندگان [English]

Vahid Ghadimi ¹
Mahdi Zhandi ²

¹ . M. Sc. Student, Department of Animal Sciences, Faculty of Agricultural Science and Engineering, University College of Agriculture & Natrual Resources, University of Tehran, Karaj, Iran

² Assistant Professor, Department of Animal Sciences, Faculty of Agricultural Science and Engineering, University College of Agriculture & Natrual Resources, University of Tehran, Karaj, Iran

چکیده [English]

The aim of this study was to evaluate the effect of bovine serum albomin (BSA) in stallion semen extender in cool condition. After collection, semen samples were pooled and divided into four equal parts. Each part was diluted with one of the following extenders: 1) extender without BSA (BSA-0), 2) extender containing 5 mg/mL BSA (BSA-5), 3) extender containing 10 mg/mL BSA (BSA-10), and 4) extender containing 15 mg/mL BSA (BSA-15). After 2, 24 and 48 hours in cool condtions, the effect of different extenders on motility, viability, plasma membrane functionality and Malondialdehyde (MDA) level were evaluated. The obtained results indicated that total sperm motility in BSA-5 and BSA-10 extenders was significantly higher compared to BSA-0 and BSA-15 extenders after 48 hours. BSA-10 extender resulted in significantly higher progressive motility compared to BSA-0 and BSA-15 extenders. Plasma membrane functionality was significantly lower in BAS-15 extender compared to other extenders after 48 hours. Viability was significantly decreased in BSA-15 extender compared to other extenders. In conclusion, BSA-15 extender had lower protective effect on total motility and plasma membrane functionality comared to other extenders at 48 hours.

کلیدواژه‌ها [English]

Caspian horse
Cooling
Sperm
bovine serum albumin

مراجع

1. Aitken, R. J. (1995). Free radicals, lipid peroxidation and sperm function. Reproduction, Fertility and Development, 7(4), 659-668.

2. Almeida, J. & Ball, B. A. (2005). Effect of alpha-tocopherol and tocopherol succinate on lipid peroxidation in equine spermatozoa. Animal Reproduction Science, 87(3), 321-337.

3. Barati, F., Papahn, A. A., Afrough, M. & Barati, M. (2011). Effects of Tyrode's solution osmolarities and milk on bull sperm storage above zero temperatures. Iranian Journal of Reproductive Medicine, 9(1), 25-30.

4. Ball, B. A. (2008). Oxidative stress, osmotic stress and apoptosis: Impacts on sperm function and preservation in the horse. Animal Reproduction Science, 107(3), 257-267.

5. Cocchia, N., Pasolini, M., Mancini, R., Petrazzuolo, O., Cristofaro, I., Rosapane, I., Sica, A., Tortora, G., Lorizio, R. & Paraggio, G. (2011). Effect of sod (superoxide dismutase) protein supplementation in semen extenders on motility, viability, acrosome status and ERK (extracellular signal-regulated kinase) protein phosphorylation of chilled stallion spermatozoa. Theriogenology, 75(7), 1201-1210.

6. Denniston, D., Squires, E., Bruemmer, J., Brinsko, S., McCue, P. & Graham, J. (2000). Effect of antioxidants on the motility and viability of cooled stallion spermatozoa. Journal of Reproduction and Fertility Supplement, 56, 121-126.

7. El-Kon, I. (2011). Testing Usability of Bovine Serum Albumin (BSA) for Preservation of Egyptian Buffalo Semen. American-Eurasian Journal of Agricultural Environment Sciense, 11 (4), 495-502.

8. Francl, A., Amann, R., Squires, E. & Pickett, B. (1987). Motility and fertility of equine spermatozoa in a milk extender after 12 or 24 hours at 20ºC. Theriogenology, 27(3), 517-525.

9. Foote, R. H., Brockett, C. C. & Kaproth, M. T. (2002). Motility and fertility of bull sperm in whole milk extender containing antioxidants. Animal Reproduction Science, 71(1), 13-23.

10. Ghadimi, V., Zhandi, M., Towhidi, A., Shehab-El-Deen, M.A.M.M. & Nouri, H. (2014). Positive effect of Manganese (III) meso-tetrakis (4-benzoic acid) porphyrin on stallion spermatozoa during storage in cool condition. Journal of Equine Veterinary Science. 34(11-12), 1329-1332.

11. Jasko, D., Hathaway, J., Schaltenbrand, V., Simper, W. & Squires, E. (1992). Effect of seminal plasma and egg yolk on motion characteristics of cooled stallion spermatozoa. Theriogenology, 37(6), 1241-1252.

12. Kubovicova, E., Riha, L., Makarevich, A., Apolen, D. & Pivko, J. (2010). Effect of different semen extenders and additives to insemination doses on ewes pregnancy rate. Slovak Journal of Animal Sciense, 43(3), 118 – 122

13. Lewis, S. E. M., Sterling, E. S. L., Young, I. S. & Thompson, W. (1997). Comparison of individual antioxidants of sperm and seminal plasma in fertile and infertile men. Fertility and Sterility, 67(1), 142-147.

14. Maxwell, W. & Stojanov, T. (1996). Liquid storage of ram semen in the absence or presence of some antioxidants. Reproduction, Fertility and Development, 8(6), 1013-1020.

15. Sanocka, D. & Kurpisz, M. (2004). Reactive oxygen species and sperm cells. Reproduction Biology and Endocrinology, 2(12), 1-7.

16. Uysal, O. & Bucak, M. (2007). Effects of oxidized glutathione, bovine serum albumin, cysteine and lycopene on the quality of frozen-thawed ram semen. Acta Veterinaria Brno, 76(3), 383-390.

17. Zhandi, M. & Ghadimi, V. (2014). The Effect of Glutathione-Supplemented INRA82 Extender on Miniature Caspian Stallion Sperm Quality during storage at 5°C. Journal of Equine Veterinary Science. 34(5), 606-610.